土壤高产普鲁兰酶产生菌的诱变开题报告

 2023-10-12 08:10

1. 研究目的与意义

自50 年代末,Bender 等首先对出芽茁霉(pullularia pullulans)——一种不完全菌产生的粘多糖普鲁兰(又称茁霉多糖)的结构进行了研究,发现这是一种以α-1 , 6 糖苷键将麦芽三糖头尾相连而形成的多糖。

1961 年,Bender 等进一步发现由产气气杆菌(Aerobacteraerogenes)所产生的细胞外酶———普鲁兰酶(又称茁霉多糖酶)可以切断普鲁兰中的α—1 , 6糖苷键,而使普鲁兰转化成麦芽三糖。

普鲁兰酶能够专一催化支链淀粉型多糖α-1 , 6 糖苷键的水解,从而使支链淀粉型多糖的分支链脱离主链形成一系列链长不一的直链淀粉。

剩余内容已隐藏,您需要先支付后才能查看该篇文章全部内容!

2. 研究内容和预期目标

1. 一株土壤高产普鲁兰酶产生菌进行诱变
2. 土壤高产普鲁兰酶诱变菌的酶动力学测定

3. 研究的方法与步骤

1、实验材料
1.1试剂与设备
普鲁兰糖(Pullulan),支链淀粉,Sigma公司;可溶性淀粉,蛋白胨,酵母膏,酵母粉,上海生工;3,5-二硝基水杨酸,广东光华化学厂有限公司;琼脂粉,广东环凯微生物科技有限公司;其他试剂均为分析纯。


实验仪器和设备:灭菌锅(HVE,日本Hirayama公司);高速冷冻离心机(Sigma2-16,德国Sigma公司);精密数显酸度计(Delta320-S,上海梅特勒-托利多仪器厂);电子天平(AR2140,奥豪斯国际贸易有限公司);数字显示电热培养箱(宁波海曙赛福实验仪器厂);高压蒸汽灭菌锅(HVE,日本Himyama公司);自动双重纯水蒸馏器(1810B,上海晶凌玻璃有限公司);恒温摇床(HQ45HYA,中国科学院武汉科学仪器厂);水浴锅(LVF6,Grant Instruments(Cambrige)Ltd);电热恒温干燥箱(Q/BKYY31-2000,上海跃进医疗器械厂)、无菌操作台(FD-01,苏州净化设备厂);紫外分光光度计(SpectrumLab 53 Power,中国Leng Tech公司); 无菌操作台(FD-01,苏州净化设备厂)。


1.2主要试剂的配制
DNS试剂:称取酒石酸钾钠 122.1674g,放入 400 mL 去离子水中,加热溶解后再加入3,5-二硝基水杨酸 3.15 g,继续加热溶解后加入氢氧化钠 10.5g ,加热溶解后加入苯酚 2.5 g,加热溶解加入Na2SO4#8226;7H2O 4.9972g(期间加热温度控制在60℃以内),冷却后去离子水定溶至500 mL,贮于棕色瓶中避光保存,放置2周后使用。

剩余内容已隐藏,您需要先支付后才能查看该篇文章全部内容!

4. 参考文献

[1] Bender H, Lehmann J, Wallenfels K . Pullulan, an extracellular g lucan from Pullularia pullulans [J]. Biochim Biophys Acta, 1959, (36): 309-316
[2] Bender H, Wallenfels K. Untersuchungen and Pullulan.Ⅱ, Spezifischer Abbau durch ein bakterielles [J]. Enzym Biochem Z, 1961, (334):79-95
[3]高涛, 王芳, 别小妹, 等. 产耐热普鲁兰酶菌株的分离、筛选与鉴定[J]. 食品科学, 2017, ( 8) : 117-121.
[4] Lu Z, Hu X, Shen P, et al. A pH-stable,detergent and chelator resistant type I pullulanase from Bacillus pseudofirmus 703 with high catalytic efficiency [J]. Int J Biol Macromol, 2018, 109: 1302-1310.
[5]刘程惠, 胡文忠. 王艳颖. 等. 鲜切生菜致腐霉菌的分离鉴定[J]. 食品工业科技, 2016, 37(3) : 135- 138.
[6]唐宝英. 耐酸耐热普鲁兰酶菌株的筛选及发酵条件的研究[J]. 微生物学通报, 2001, 28(1):39-43.
[7]乔宇. I-型普鲁兰酶产业菌的筛选及其基因、克隆、分子改造和高密度发酵表达研究 [D]. 中国农业科学院, 2012.
[8]陈文波. 普鲁兰酶的产生菌筛选及其表达与分泌调控[D]. 江南大学, 2013.
[9]王剑锋. 新型耐热普鲁兰酶的筛选、分子改良及固定化研究[D]. 江南大学, 2018.
[10] 吴永, 王淑军, 吕明生, 等. 一株产普鲁兰酶菌株的筛选鉴定、酶学性质及海带多糖酶解产物的抗氧化活性[J]. 食品工业科技, 2018, 39(17): 106-111.
[11] 董桂秀, 杨平平, 夏涛, 等. 普鲁兰酶的研究进展[J]. 安徽农业科学, 2012, 40(18) : 9874-9877.
[12]谢能中, 王青艳, 米慧芝, 等. 产普鲁兰酶克雷伯氏菌的分离鉴定及酶学性质研究[J]. 广西科学, 2013, 20(1): 35-39.
[13]康怀彬, 肖天天, 李净净, 等. 嗜冷普鲁兰酶产生菌NX-1的筛选及产酶条件优化[J]. 食品科学, 2015, 36(1) : 118-123.
[14] 王新. 普鲁兰酶产生菌的选育及产酶特性研究[D]. 福州: 福州大学, 2014
[15] Punina N V, Zotov V S, Parkhomenko A L, et al. Genetic Diversity of Bacillus thuringiensis from different geo - ecological regions of Ukraine by analyzing the 16S rRNA and gyrB Genes and by AP- PCR and saAFLP [J]. Acta Naturae, 2013, 5(1) : 90-91.
[16] Roy A, Messaoud E B, Bejar S. Isolation and purification of an acidic pullulanase type II from newly isolated Bacillus sp.US149 [ J]. 2003, 33(5): 720-724.
[17]Singh R S, Saini G K, Kennedy J F. Covalent immobilization and thermodynamic characterization of pullulanase for the hydrolysis of pullulan in batch system [J]. Carbohydrate Polymers, 2010, 81(2) : 252-259.
[18] Singh R S, Saini G K, Kennedy J F. Maltotriose syrup preparation from pullulan using pullulanase [J]. Carbohydrate Polymers, 2010, 80(2) : 401-407.
[19] Li X, Fu J, Wang Y, et al. Preparation of low digestible and viscoelastic tigernut (Cyperus esculentus) starch by Bacillus acidopullulyticus pullulanase [J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2017, (102) : 651-657.

5. 计划与进度安排

1、2024-2024-1学期17-20周~2024-2024-2学期1-2周(2024-12-19~2024-3-3),接受任务、查阅和翻译文献,撰写开题报告;
2、第2周~第3周(2024-2-27~2024-3-10),完成实验前准备工作,配制各实验所需药品。


3、第4周~第5周(2024-4-13~2024-3-24),预实验。


4、第6周~第10周(2024-3-27~2024-4-28),一株土壤高产普鲁兰酶产生菌进行诱变。

剩余内容已隐藏,您需要先支付 10元 才能查看该篇文章全部内容!立即支付

发小红书推广免费获取该资料资格。点击链接进入获取推广文案即可: Ai一键组稿 | 降AI率 | 降重复率 | 论文一键排版